Обоснование перечня приоритетных контролируемых санитарно-микробиологических показателей для обеспечения безопасности внутрибольничной среды медицинских организаций стационарного типа вне зависимости от их функционального назначения

https://doi.org/10.33029/0016-9900-2020-99-4-326-336

Резюме

Введение. Работа посвящена оценке результатов собственных исследований санитарно-микробиологического мониторинга объектов внешней среды в разнопрофильных лечебно-профилактических учреждениях стационарного типа и анализа отечественных и зарубежных данных в целях обоснования перечня приоритетных контролируемых санитарно-микробиологических показателей воздуха и поверхностей для обеспечения безопасности внутрибольничной среды медицинских организаций стационарного типа (МОСТ) вне зависимости от их функционального назначения.

Материал и методы. Проводились исследования помещений различного назначения в лечебно-профилактических учреждениях стационарного типа в течение двух лет. Исследования включали определение микробной обсеменённости воздушной среды, рабочих поверхностей, рук персонала с определением бактериологических, вирусологических, микологических показателей с последующей макроскопической и микроскопической идентификацией микроорганизмов и идентификацией с применением автоматизированных систем времяпролётного матрично-ассоциированного лазерного масс-спектрометра на платформе MALDI-TOF, которая основывается на изучении масс-спектров рибосомальных белков в диапазоне 1000-10 000 дальтон и биоинформационного сравнения полученного спектра с базой данных референтных спектров и данных секвенирования микроорганизмов.

Результаты. В результате проведённых исследований в помещениях многопрофильной клиники было выявлено микробное загрязнение условно патогенными грамположительными микроорганизмами, в том числе Staphylococcus aureus, и грамотрицательными бактериями, что представляет серьёзную эпидемиологическую опасность для пациентов этих палат независимо от профиля лечебного учреждения и требует обязательного контроля с учётом применяемых средств дезинфекции.

Заключение. Собственные исследования и анализ отечественной и зарубежной литературы показали, что недостаточно осуществлять контроль воздушной среды в помещениях МОСТ только по показателю общего микробиологического загрязнения. Как в операционных, процедурных и перевязочных блоках, так и в палатах, физиотерапевтических, диагностических, лабораторных помещениях и вспомогательных помещениях также необходимо учитывать и другие санитарно-микробиологические показатели: общее микробное число, количество грамположительных палочек и кокков, в том числе Staphylococcus aureus, грибы, адено-, энтеро-, астровирусы, колифаги.

Ключевые слова:инфекции, связанные с оказанием медицинской помощи; медицинские организации стационарного типа; микробиологический мониторинг; возбудители внутрибольничных инфекций; воздух; смывы; поверхности; бактерии; вирусы; грибы.

Юдин С.М., Русаков Н.В., Загайнова А.В., Грицюк О.В., Курбатова И.В., Федец З.Е., Новожилов К.А., Абрамов И.А., Ракова В.М., Доскина Т.В., Сухина М.А. Обоснование перечня приоритетных контролируемых санитарно-микробиологических показателей для обеспечения безопасности внутрибольничной среды медицинских организаций стационарного типа вне зависимости от их функционального назначения. Гигиена и санитария. 2020; 99(4): 326-336. DOI: https://doi.org/10.33029/0016-9900-2020-99-4-326-336

Литература

1. Wenzel R.P. The Lowbury Lecture. The economics of nosocomial infections. J Hosp Infect. 1995; 31: 79-87.

2. Национальная Концепция профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (утв. Главным государственным санитарным врачом РФ 6 ноября 2011 г.).

3. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2018 году: Государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека; 2019. 254 с.

4. Guideline for isolation precautions: Preventing transmission of infectious agents in healthcare settings. 2014. Available at: http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/isolation/Isolation2007.pdf (date of the application: 28.01.2020)

5. Guidelines for prevention of catheter-associated urinary tract infections. Available at http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/CAUTI/CAUTIguideline-2009final.pdf

6. Circulation for disinfection and sterilization in healthcare facilities. 2008. Available at: http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/Disinfection_Nov_2008.pdf (date of the application: 28.01.2020)

7. Guidelines for environmental infection control in health care facilities. Available at: http://www.cdc.gov/hicpac/pdf/guidelines/eic_in_HCF_03.pdf (date of the application: 28.01.2020)

8. WHO guidelines on hand hygiene in health care: A summary. 2014. Available at: http://www.whqlibdoc.who.int/hq/2009/WHO_IER_PSP_2009.07_eng.pdf (date of the application: 28.01.2020)

9. Wysocki A.B. Evaluating and managing open skin wounds: Colonization versus infection. AACN Clin Issues. 2002; 13: 382-97.

10. Plowman R., Graves N., Griffin M., Roberts J.A., Swan A.V., Cookson B. et al. The socioeconomic burden of hospital acquired infection. London Public Health Laboratory Service and the London School of Hygiene and Tropical Medicine; 1999.

11. Lorente L., Blot S., Rello J. Evidence on measures for the prevention of ventilator-associated pneumonia. Eur Respir J. 2007; 30: 1193-207.

12. Maselli D.J., Restrepo M.I. Strategies in the prevention of ventilatorassociated pneumonia. Ther Adv Respir Dis. 2011; 5: 131-41.

13. Coffin S.E., Klompas M., Classen D., Arias K.M., Podgorny K., Anderson D.J. et al. Strategies to prevent ventilator-associated pneumonia in acute care hospitals. Infect Control Hosp Epidemiol. 2008; 29: 31-40.

14. Feretzakis G., Loupelis E., Sakagianni A., Kalles D., Martsoukou M., Lada M. et al. Using Machine Learning Techniques to Aid Empirical Antibiotic Therapy Decisions in the Intensive Care Unit of a General Hospital in Greece. Antibiotics (Basel). 2020; 9 (2): 50. DOI: https://doi.org/10.3390/antibiotics9020050

15. Liu J., Gao Y., Wang X., Qian Z., Chen J., Huang Y. et al. Culture-Positive Spontaneous Ascitic Infection in Patients with Acute Decompensated Cirrhosis: Multidrug-Resistant Pathogens and Antibiotic Strategies. Yonsei Med J. 2020; 61 (2): 145-53. DOI: https://doi.org/10.3349/ymj.2020.61.2.145

16. Tian H., Chen L., Wu X., Li F., Ma Y., Cai Y. et al. Infectious Complications in Severe Acute Pancreatitis: Pathogens, Drug Resistance, and Status of Nosocomial Infection in a University-Affiliated Teaching Hospital. Dig Dis Sci. 2019. DOI: https://doi.org/10.1007/s10620-019-05924-9

17. Kara S., Akçay M.Ş., Ekici Ünsal Z., Bozkurt Yılmaz H.E., Habeşoğlu M.A. Comparative analysis of the patients with community-acquired pneumonia (CAP) and health care-associated pneumonia (HCAP) requiring hospitalization. Tuberk Toraks. 2019; 67 (2): 108-15. DOI: https://doi.org/10.5578/tt.68421

18. Admas A., Gelaw B., Belay T., Worku A., Melese A. Proportion of bacterial isolates, their antimicrobial susceptibility profile and factors associated with puerperal sepsis among post-partum/aborted women at a referral Hospital in Bahir Dar, Northwest Ethiopia. Antimicrob Resist Infect Control. 2020; 9: 14. DOI: https://doi.org/10.1186/s13756-019-0676-2

19. Kiponza R., Balandya B., Majigo M.V., Matee M. Laboratory confirmed puerperal sepsis in a national referral hospital in Tanzania: etiological agents and their susceptibility to commonly prescribed antibiotics. BMC Infect Dis. 2019; 19 (1): 690. DOI: https://doi.org/10.1186/s12879-019-4324-5

20. Oda M., Yokotani A., Hayashi N., Kamoshida G. Role of Sphingomyelinase in the Pathogenesis of Bacillus cereus Infection. Biol Pharm Bull. 2020; 43 (2): 250-3. DOI: https://doi.org/10.1248/bpb.b19-00762

21. Wenzel R.P. The Lowbury Lecture. The economics of nosocomial infections. J Hosp Infect. 1995; 31: 79-87.

22. Шафир А.И. Микробиологический метод гигиенического исследования воздуха. Л.: Военно-морская медицинская академия; 1945. 165 с.

23. Литвина Л.А., Анфилофьева И.Ю. Микроорганизмы воздуха: учебнометодическое пособие. Новосибирск.: Новосибирский государственный аграрный университет; 2016. 27 с.

24. Карпухин Г.И. Бактериологическое исследование и обеззараживание воздуха. М.: Медгиз; 1962. 256 с.

25. Лерина И.В., Педенко А.И. Руководство к лабораторным занятиям по микробиологии. М.: Экономика; 1980. 151 с.

26. Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология (под ред. проф. А.И. Коротяева). СПб.: СпецЛит; 1998. 580 с.

27. Вассерман А.Л., Шандала, М.Г., Юзбашев В.Г. Применение ультрафиолетового излучения для обеззараживания воздуха в лечебных палатах в ряду мероприятий по профилактике внутрибольничных инфекций. Поликлиника. 2013; 6: 74-6.

28. Черкасский Б.Л. Инфекционные и паразитарные болезни человека. М.: Медицинская газета; 1994. 617 с.

29. CIBSE TM26: Hygienic maintenance of office ventilation ductwork (UK).

30. Coffin S.E., Zaoutis T.E. Infection control, hospital epidemiology, and patient safety. Infect Dis Clin North Am. 2005; 19: 647-65.

31. Dellit T.H., Owens R.C., McGowan J.E. Jr., Gerding D.N., Weinstein R.A., Burke J.P. et al. Infectious Diseases Society of America and the Society for Healthcare Epidemiology of America guidelines for developing an institutional program to enhance antimicrobial stewardship. Clin Infect Dis. 2007; 44: 159-77.

32. Wanner H.U. Germ content of the air in the operating rooms. Zentralbl Bakteriol Orig. 1970; 212 (2): 354-6.

33. Wanner H.U., Huber G., Meierhans R., Weber B.G. Optimum utilization of the ventilation system to reduce airborne bacteria in operating rooms. Helv Chir Acta. 1980; 47 (3-4): 493-504.

34. Esdorn H. Air conditioning systems in hospitals-source of danger or means for the accomplishment of hygienic measures? Gesund Ing. 1977; 98 (6): 153-9.


Журналы «ГЭОТАР-Медиа»